タンパク質の機能を調べるためには、まず生体サンプルを可溶化してタンパク質を抽出することが重要です。サンプルが細胞や動物組織なのか、大腸菌などの菌体なのか、それともNative-PAGEで使用するタンパク質を抽出するのか、など、サンプルの種類や目的により抽出方法は異なります。アトー製品には、様々なサンプル、目的に応じた短時間で簡単にタンパク質を抽出する試薬や、とっても便利な小型機器を取り揃えています。

解析目的に応じてSDS-PAGE やNative-PAGE、２次元電気泳動などの様々な電気泳動方法が活用されています。サンプル調製方法は電気泳動方法（SDS-PAGE,Native-PAGE, 2D-PAGEなど）により異なります。各種電気泳動に適したサンプル調製試薬やブロックインキュベータなどの汎用機器などを取り揃えております。

SDS-PAGEはSDSを付加して、タンパク質を負に帯電させ、アクリルアミドゲルを利用して、分子量の違いでふるい分ける方法です。逆にNative-PAGEはタンパク質を変性させずに分離する方法です。Nativeな構造を保ったままタンパク質を負に帯電させて泳動するBN-PAGE, HR-CN-PAGEなど様々なNative-PAGE法に適した試薬を取り揃えております。

電気泳動ではアクリルアミドゲルを使ってタンパク質のバンドを分離しますが、そのままではバンドを確認することはできません。そこで、クーマジーブリリアントブルーなどの色素染色や、写真現像の原理を応用した銀染色などによりバンドを可視化します。アトー製品には短時間で高感度に簡単にゲル染色できる様々な試薬を取り揃えております。

細胞や組織、血液など様々な試料からDNAを抽出します。DNAを構成しているヌクレオチドはリン酸残基によりマイナスに荷電しているため、SDS-PAGEのように負電荷を付加する必要はありません。比重をつけるために、抽出したDNAにサンプルバッファーを添加し、泳動サンプルを調製します。

アガロースゲル電気泳動は、ゲルを緩衝液に沈めて電気泳動をすることから、海中の潜水艦（サブマリン） に例えて、サブマリン電気泳動といわれています。アガロースゲルにDNAを添加し、緩衝液中で電気を流すと、DNAはプラス側に移動します。大きいサイズのDNAはゆっくりと、小さいDNA は速く動くため、DNAの大きさにより分離することができます。より小さなDNAはアクリルアミドゲルで泳動分離することできます。アトーの既製ゲルや泳動装置は核酸の電気泳動にも適しています。

泳動後のゲルを蛍光染色試薬またはエチジウムブロマイド(EtBr)などで染色します。EtBrは人体に有害なうえに、検出するためのUV照射により核酸が分解されるため、検出感度が徐々に下がります。核酸用の蛍光染色試薬は、有害性が低く、UV以外の励起光が使用できるので、安全に感度良く検出が可能です。アトー製品にはDNA/RNA用の安全な蛍光染色試薬や染色に便利なシーソーシェーカーなどの汎用機器がございます。

染色後のゲルを蛍光撮影し、分離したバンドを確認、解析します。検出方法、特に検出試薬に最適な光源とフィルターの組み合わせで、蛍光イメージングを行うことです。アトーには様々な核酸検出試薬に適した蛍光光源とフィルターの組み合わせで、またシンプルな操作で染色結果を撮影できるゲル撮影装置があります。