実験の流れ

ステップ			使用する製品
		１．サンプル調製 細胞や組織などからRIPA Lysisバッファー やSDSサンプルバッファーでタンパク質を抽出し、SDS処理および還元処理を行います。	タンパク質抽出・処理液 EzRIPA Lysis kit, EzApply, EzLabel FluoroNeo ブロックインキュベータ MyMiniBLOCK, PowerBLOCK
		２．電気泳動 SDSポリアクリルアミドゲル電気泳動によりタンパク質を分離します。目的タンパク質により、アクリルアミドの濃度を変えます。	ゲル・電極液 ePAGEL HR, EzRun, EzRun MOPS 電気泳動槽・パワーサプライ PageRunAce, PowerStation Ghibli I, MyPower II
		３．トランスファー 電気泳動で分離したタンパク質をゲルからPVDF膜に転写します。	トランスファーバッファー EzFastBlot HMW, EzFastBlot ブロッター・パワーサプライ PoweredBLOT 2M
		４．ブロッキング タンパク質バンドがない膜表面に、抗体が非特異的に結合しないようにブロッキングします。	ブロッキング剤 EzBlockChemi シェーカー SeesawShaker atto
		５．抗体反応 ターゲットタンパク質に対する抗体（一次抗体）および酵素で標識された抗体（二次抗体）と反応します。	抗体・洗浄液 EzTBS, EzTween シェーカー SeesawShaker atto
		６．検出 二次抗体に標識された酵素を発色基質あるいは発光基質と反応して、ターゲットタンパク質のバンドを間接的に検出します。	発光・発色基質 EzWestLumiOne, EzWestBlue Wなど 化学発光撮影装置 Luminograph I/II/III

実験方法

電気泳動~ブロッキング

抗体反応と検出の準備

ブロッキングをしている間に抗体の準備をします。

洗浄液　

ミニゲル1枚当たり500mL準備します。
●　TBS-T: EzTween（あるいは0.01~0.1%Tween 20）含有1×EzTBS (あるいは50 mM Tris, 137 mM NaCl, 2.7 mM KCl/pH7.4）
●　PBS-T: EzTween（あるいは0.01~0.1%Tween 20）含有1×EzPBS (あるいは137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 81 mM Na2HPO4, 14.7 mM KH2PO4
※リン酸化タンパク質を検出する際は、なるべくTBS-Tを使用します。　　　

抗体　

一般的にターゲットタンパク質に対する１次抗体と検出用の酵素や蛍光が標識された２次抗体を準備します。１次抗体が直接標識されている場合は２次抗体は不要です。
抗体の希釈率は抗体や検出試薬の添付文書を参考にして決めます。サンプルや時間に余裕がある場合は、ドットブロッティングで適切な抗原の検出感度になるように希釈率を検討します。また抗体の希釈は抗体反応の直前に行います。抗体を希釈した状態で長時間置くと失活する場合があります。
　　　
抗体の選択方法
１次抗体：抗原（Antigen)、交差種（Cross reactivity),免疫動物（host)、用途（WB, IP, ICC,,,)およびアプリケーションデータなどを参考にして、実験の目的に合うものを選択します。２次抗体を介さずに検出する場合は標識されている抗体を選択します。
（例）ウェスタンブロッティング用のヒトトランスフェリン抗体（Anti-HumanTransferrin　Rabbit Poly　抗原：ヒトトランスフェリン　免疫動物：ウサギ　など）
●　抗原：（ヒト）トランスフェリン（他ペプチド、発現タンパク質等）
●　交差種：ヒト、マウス、ラット（必ずヒトが含まれるもの*）
●　免疫動物：ウサギ（他マウス、ヤギ等）
●　用途：WB、EIA、IP（必ずWBが含まれるもの）

２次抗体：１次抗体と同様ですが、検出方法に適した標識（HRP, ALP, Rhodamin,,,)がされているものを選択します。
（例）上記の１次抗体に対する２次抗体Goat （Anti-Rabbit IgG H&L 　(HRP)　抗原：ウサギIgG（重鎖軽鎖）　免疫動物：ヤギ　　標識：HRPなど）
●　抗原：ウサギIgG（１次抗体の免疫動物の抗体。１次抗体がモノクローナル抗体の場合は抗体のアイソタイプ（IgG, IgA, IgM等）に注意し、またFab断片化されている場合には重鎖（Fc)のみを認識する抗体は除外するように選択します）
●　交差種：なし（できるだけ交差種がないもの）
●　免疫動物：ヤギ（１次抗体の免疫動物であるウサギ、及びターゲットタンパク質であるヒトが含まれていないもの*）
●　用途：WB、EIA、IP（必ずWBが含まれるもの）
●　標識：HRP（一般的に発光検出する場合はHRPかALP）

検出試薬　

蛍光色素でラベルされた抗体を使用した場合は、検出試薬は不要です。各蛍光色素に適した励起光を使用し、励起した特定波長の蛍光をフィルター等で分離して取得します。
ALP（アルカリホスファターゼ）やHRP（西洋わさびペルオキシダーゼ）などの酵素でラベルされた抗体を使用した場合は、それぞれの酵素の基質からなる検出試薬を使用してシグナルを取得します。アトーでは下記3種類のHRPに対する検出試薬を販売しています。

抗体反応と検出方法

下記に従って抗体反応~検出反応および撮影をします。

	ブロッキング終了後、ブロッキング溶液を廃棄し、TBS-T等で希釈したターゲットタンパク質に対する1次抗体を添加します。1次抗体の希釈率は購入した抗体の添付シートに記載の情報をもとに判断します。一般的には100~5,000倍にTBS(-T)やPBS(-T)で希釈します。一般的には室温で約１時間、もしくは４℃で一晩、シェーカーでインキュベートします。抗体によって温度と時間は検討する必要があります。
	抗体溶液を廃棄し、少量のTBS-T/PBS-Tで軽くすすぎます。新たにTBS-T/PBS-Tを約50mL/膜 添加し、シェーカーで5分間インキュベートします。この洗浄工程を3回繰り返します。
	洗浄液（TBS-T/PBS-T)を廃棄し、酵素や蛍光で標識された2次抗体を添加します。2次抗体の希釈率は購入した抗体と検出試薬の添付シートに記載された情報をもとに判断します。一般的には5,000~500,000倍にTBS-T/PBS-Tで希釈します。バックグランドが高い場合は、TBS-T/PBS-Tのかわりにブロッキング溶液（適宜希釈）を使用します。一般的には室温で約１時間、もしくは４℃で一晩シェーカーでインキュベートします。
	抗体溶液を廃棄し、少量のTBS-T/PBS-Tで軽くすすぎます。新たにTBS-T/PBS-Tを約50mL/膜 添加し、シェーカーで5分間インキュベートします。この洗浄工程を3回繰り返します。
	検出直前に検出試薬を計量、混合などの調整を行います。清潔なラップあるいは容器に調整した検出用液を全量注ぎます。ブロッティング膜（PVDF膜）をピンセット等でつまみ上げ、余分なTBS-T/PBS-Tをペーパータオル等で完全に除去します。ブロッティング膜を検出試薬に浸漬します。その際、空気が入らないように気を付け、素早く、均一に検出試薬が膜に広がるようにします。膜の表と裏に検出試薬が十分浸透されることを確かめます。発色検出の場合は、十分に発色されるまで反応し、その後蒸留水ですすいでから、シグナルを撮影します。発光検出の場合は、膜をラップやフィルムシートに密閉し、撮影装置で撮影します。
	高感度発光/蛍光撮影装置を使用して発光あるいは蛍光シグナルを撮影します。

発光を撮影する場合
絞りは全開にセットし、フィルター等は使用しません。密閉したブロッティング膜を撮影区域の中央に置き、ピントを合わせます。撮影モード（Standard、Highなど)を選択し、撮影時間（5秒、1分、5分など）を設定して撮影します。有色マーカーを使用したときはマージ像を得るために明視野も撮影します。

蛍光を撮影する場合
標識蛍光色素に適した励起光を使用し、蛍光の取得に適したフィルターを使用します。密閉したブロッティング膜を撮影区域の中央に置き、励起光を点灯した状態でピントを合わせて撮影します。

参考データ

実験例　抗体の希釈濃度の影響

上図は200 pg/レーン～1/2希釈したヒトトランスフェリンを電気泳動し、ヒトトランスフェリン抗体およびHRP標識２次抗体で検出した結果です。1次抗体および2次抗体の希釈率を右表のように変えて反応し、EzWestLumiOneあるいはEzWestLumi plusでバンドを検出した結果です。条件２に比べて条件１は一次抗体濃度が半分以下ですが、結果はほとんど変わりません。逆に、条件2と3は一次抗体濃度は同じですが、2次抗体濃度が5倍であり、これらを比較すると条件3はシグナル強度も検出感度もはるかに優れていることが判ります。また条件1と4は２次抗体濃度は同じですが、１次抗体濃度が5倍です。検出感度は一次抗体濃度が高い方が高くなりますが、シグナルは弱いままです。このように同じタンパク質量を泳動して転写したブロッティング膜を使用しても、1次抗体と2次抗体の濃度によって検出感度やシグナル強度が大きく異なることが示されました。もちろん検出試薬によっても検出感度は異なりますが、検出試薬だけではなく抗体濃度の検討も重要であることが判ります。

実験例　抗体の希釈濃度の影響

上図は500 pg/レーン～1/2希釈したヒトトランスフェリンを電気泳動し、転写したブロッティング膜を1/4,000希釈したヒトトランスフェリン抗体および1/10,000希釈したHRP標識２次抗体と反応し、EzWestLumiOneあるいはEzWestLumi plusでバンドを検出した結果です。上記の結果のようにEzWestLumiOneは1時間以上シグナルが安定であり、またEzWestLumi plusは発光強度は若干下がりますが3時間まで安定にシグナルを検出できることが示されました。

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QBlot kit シリーズ

親水化・平衡化済みのPVDF膜とパットがセットになったセミドライブロッティング用のトランスファーパックです。1回分のパックの封を切り電気泳動後のゲルを乗せればすぐにブロッティングが可能です。最短5～10分の転写ができます。各種セミドライブロッティング装置に対応します。　　　

	キット内容	WSE-4056 QBlot kit C: Top/Bottom Stack：65×65mm　各10パック Gel Wash Buffer（5×)：100mL 　　　　 WSE-4057 QBlot kit M: Top/Bottom Stack：90×85mm　各10パック Gel Wash Buffer（5×)：100mL 　　　 WSE-4058 QBlot kit W: Top/Bottom Stack：135×85mm　各6パック Gel Wash Buffer（5×)：100mL
	分子量範囲	～250kDa
	保存期間	1年間（冷蔵）
	容量	WSE-4056/7  10回分/箱、WSE-4058  6回分/箱

動画で紹介

簡単！きれい！速い！　QBlot kitの操作説明動画

参考資料

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